Résultats Trompeurs; Contrôle De Qualité - Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation

3. La limite concerne uniquement l'utilisation de plaques sans dilution 16 µg/mL.
11. Il est possible de distinguer l'E. faecium résistant à la vancomycine de l'E. gallinarum en vérifiant la motilité et la production
de pigment (voir le tableau des tests supplémentaires dans le « Microbiologics Manual » [Manuel de microbiologie]).
12. Les intervalles de CQ pour certains antimicrobiens ne sont pas en accord avec les intervalles de contrôle de qualité
acceptables par le CLSI comme listés dans le document du CLSI. Consulter le tableau Contrôle de qualité pour obtenir
des informations spécifiques.
13. Le système Prompt a montré des CMI augmentées pour les staphylocoques avec les fluoroquinolones (p. ex. :
ciprofloxacine), les lincosamides (p. ex. : clindamycine) et les macrolides (p. ex. : érythromycine) par comparaison aux
méthodes de référence. La concentration de l'inoculum est essentielle pour ces combinaisons organisme/antimicrobien.
Si une interprétation « Intermédiaire » ou « Résistant » est obtenue à l'aide du système Prompt, une autre méthode
d'obtention d'un résultat de sensibilité doit être utilisée (p. ex. : la turbidité avec un format sans concentration critique)
avant de rapporter les résultats.
14. Les tests par dilution en bouillon ou sur gélose peuvent ne pas détecter précisément la résistance à la pénicilline et à
l'ampicilline avec des souches d'entérocoques produisant des β-lactamases.
15. La capacité des plaques MicroScan conventionnelles pour Gram positifs à détecter la résistance au méropénème
parmi L. monocytogenes est inconnue en raison de la non-disponibilité de souches résistantes lors des évaluations
comparatives.
16. La capacité des plaques MicroScan conventionnelles pour Gram positifs à détecter la résistance au linézolide et à la
ceftaroline est inconnue en raison de la non-disponibilité de souches résistantes lors des évaluations comparatives.
17. Il est important de déterminer l'espèce des souches Enterococcus en raison de l'absence d'activité du Synercid par
rapport à E. faecalis.
18. Les résultats des instruments autoSCAN-4 et WalkAway obtenus pour les S. saprophyticus et la mupirocine ont donné
des valeurs de CMI non concordantes par comparaison avec la lecture manuelle des plaques. Les résultats CMI de ces
isolats doivent être obtenus en lisant manuellement les plaques.
19. Les plaques MicroScan conventionnelles pour Gram positifs ont détecté la résistance à la vancomycine chez les
souches de S. aureus SARV disponibles au moment des évaluations comparatives. La capacité des plaques MicroScan
conventionnelles pour Gram positifs dans la détection de la résistance à la vancomycine chez d'autres S. aureus est
inconnue en raison du nombre limité de souches résistantes pour les évaluations comparatives.
20. Les résultats de l'instrument autoSCAN-4 obtenus avec la vancomycine et les staphylocoques ont montré un potentiel
pour une légère croissance à 16 heures d'incubation. Les résultats de la vancomycine avec les staphylocoques doivent
être lus sur l'instrument autoSCAN-4 après 18–20 heures d'incubation.
21. Le système Prompt a montré des CMI de la daptomycine élevées avec les staphylocoques comparées à la méthode de
référence. Si une interprétation « Non sensible » est obtenue à l'aide du système Prompt, une autre méthode d'obtention
d'un résultat « Sensible » doit être utilisée (p. ex. : la turbidité) avant de rapporter les résultats.
22. Le système Prompt ne doit pas être utilisé lorsque la taille de la colonie est inférieure à l'embout de la tige. Exemple
d'organismes qui peuvent ne pas répondre aux exigences de taille ; Streptococcus spp. autres que le groupe S. bovis
et S. agalactiae (Groupe B). Piquer des colonies qui sont trop petites peut conduire à une sous-inoculation qui pourra
faire apparaître un organisme résistant comme faussement sensible. Une méthode alternative pour la préparation de
l'inoculum doit être utilisée pour les colonies plus petites que la pointe de la tige du Prompt.
23. Les résultats de CMI pour les espèces Abiotrophia/Granulicatella, Aerococcus urinae, Aerococcus viridans,
Erysipelothrix, Gemella haemolysans, Gemella morbillorum, Gemella, Kytococcus sedentarius, Leuconostoc,
Listeria innocua/seeligeri, Pediococcus, Rhodococcus equi, Rothia dentocariosa, Rothia mucilaginosa et Rothia sont
contre-indiquées pour cette utilisation et ne doivent pas être rapportés.
RÉSULTATS TROMPEURS
Le document de référence CLSI M07-A10 informe que des résultats dangereusement trompeurs peuvent se produire
lorsque certains antimicrobiens sont testés avec certains organismes.
incluent : les céphalosporines, les aminosides (sauf les tests de résistance de haut niveau), la clindamycine et le
triméthoprime/sulfaméthoxazole.
LabPro rendra uniquement compte de la valeur de CMI, mais pas de l'interprétation, lorsque les combinaisons
antimicrobien/organisme indiquées ci-dessus sont rencontrées.
CONTRÔLE DE QUALITÉ
L'acceptabilité des milieux d'identification et des agents antimicrobiens doit être vérifiée en testant les organismes présentant
des réactions et des plages de CMI connues. Consulter le Tableau de référence de CQ pour connaître les organismes de
contrôle de qualité et les résultats finaux admissibles.
C29870–AD
Pour Listeria spp. ces antimicrobiens incluent les céphalosporines.
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Pour les entérocoques, ces antimicrobiens
Le système