Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation page 55

terapeutico. 34,35 Secondo il documento di CLSI M07-A10, il metodo raccomandato per il rilevamento della resistenza ad alto
livello agli aminoglucosidi (HLAR) per la microdiluizione in brodo è il seguente.
Antimicrobico
Gentamicina
Streptomicina
1. Risultati analoghi sono stati ottenuti con un numero limitato di test in brodo fosfato con destrosio.
L'efficacia degli screening del sinergismo per kanamicina, gentamicina e streptomicina sui pannelli MicroScan è stata
confrontata con i metodi di riferimento in microdiluizione raccomandati da CLSI. Ogni traccia di torbidità deve essere
considerata come crescita; in alternativa, deve essere ripetuta l'incubazione per confermare i risultati. I risultati ottenuti
con il sinergismo della gentamicina dopo un'incubazione di 18 ore sono paragonabili a quelli ottenuti dopo 24 ore con il
metodo di riferimento. Per un rilevamento ottimale della resistenza con lo screening del sinergismo della streptomicina, i
panelli MicroScan devono essere incubati per 24–48 ore. Per un rilevamento ottimale della resistenza con lo screening del
sinergismo della kanamicina, i panelli MicroScan devono essere incubati per 24 ore.
POZZETTO DI CRESCITA SENZA TIMIDINA
Alcuni batteri necessitano della timidina per crescere. Questi batteri possono mostrare una falsa sensibilità ai sulfonamidi a
causa della mancanza di timidina nel brodo Mueller-Hinton. Qualora non si osservi la crescita di un organismo nel pozzetto
TFG, la MIC per T/S non deve essere refertata.
DAPTOMICINA
La daptomicina include l'integrazione con calcio come raccomandato da CLSI. Non è necessaria altra integrazione.
LIMITI DEL METODO
1. I pannelli MicroScan Gram positivi non devono essere utilizzati per determinare la suscettibilità degli streptococchi eccetto
S. agalactiae (Gruppo B) e gruppo S. bovis. Questi isolati vanno testati utilizzando un metodo accettato come il pannello
MicroScan MICroSTREP plus.
2. CLSI raccomanda l'integrazione del brodo Mueller-Hinton con sangue lisato di cavallo quando si testano streptococchi
esigenti (documento di CLSI M07) e L. monocytogenes (documento di CLSI M45).
Gran positivi disidratati differisce da questa raccomandazione. Se nel pozzetto di crescita vi è una crescita inadeguata,
i risultati della MIC da S. agalactiae (Gruppo B), gruppo S. bovis e L. monocytogenes non sono validi e sarà necessario
utilizzare un metodo alternativo.
3. Il pannello MicroScan Gram positivo disidratato può essere utilizzato per identificare gli streptococchi esigenti. Se nel
pozzetto di crescita si assiste a una crescita inadeguata, i risultati biochimici non sono validi ed è necessario utilizzare
un metodo alternativo.
4. Batteri anaerobi: i pannelli Pos Combo/Pos MIC non sono indicati per l'analisi dei cocchi Gram positivi anaerobi.
5. Quando si ottiene una bassa probabilità di identificazione (< 85%), possono essere necessari altri test per ottenere
l'identificazione finale; consultare il Microbiologics Manual (Manuale di microbiologia).
6. I valori MIC della penicillina per gli stafilococchi coagulasi negativi potrebbero non essere utili per prevedere la resistenza
dovuta a β-lattamasi. Quindi, per confermare il valore MIC occorre eseguire un test per la β-lattamasi. È stato dimostrato
che ceppi di S. saprophyticus con MIC per la penicillina di 1–2 μg/mL non producono β-lattamasi, pertanto ampicillina,
amoxicillina o penicillina potrebbero essere i farmaci di elezione in caso di infezioni delle vie urinarie dovute a questi
organismi.
7. Occasionalmente, nei pozzetti di qualche antimicrobico può comparire un leggero velo dovuto all'incompleta solubilità di
alcuni costituenti dei terreni. Questo fenomeno non deve essere interpretato come crescita.
8. L'interpretazione dei risultati dei test richiede personale clinico addestrato che, se necessario, utilizzi il proprio giudizio,
le proprie conoscenze e altri test di conferma prima di accettare l'identificazione di un organismo.
9. I numeri di biotipo non devono essere utilizzati per l'identificazione del fenotipo di ceppi isolati da vari campioni dello
stesso paziente.
10. I risultati ottenuti con le combinazioni organismo/agente antimicrobico elencate sotto hanno mostrato MIC discrepanti
rispetto al metodo di riferimento overnight. Se l'agente antimicrobico è critico per la cura del paziente, occorre utilizzare
una procedura alternativa, oppure l'agente antimicrobico non va refertato a causa della bassa correlazione.
C29870–AD
Medio Incubazione
BHI
1
BHI 24–48 ore
1
Concentrazione
24 ore 500 μg/mL
1.000 μg/mL
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La procedura dei pannelli MicroScan
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