Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation page 69

variable y debe comprobarse antes de notificar los aislados como sensibles a oxacilina (solo mecA negativo). Estos criterios
también deberán seguirse cuando los resultados se interpreten manualmente, en cuyo caso el asterisco no es necesario.
PRUEBA DE CLINDAMICINA INDUCIBLE
La prueba de resistencia inducible a la clindamicina está diseñada para detectar la resistencia inducible a la clindamicina en
los estafilococos resistentes o intermedios a la eritromicina y sensibles o intermedios a la clindamicina. La expresión de la
resistencia debido al gen erm puede requerir inducción mediante eritromicina. Los resultados de ICd son equivalentes a la
prueba de aproximación de disco zona D. Los criterios de interpretación se muestran en la tabla siguiente:
Prueba antimicrobiana
Prueba de resistencia
inducible a la clindamicina
— estafilococos
Cuando la eritromicina es I o R y la clindamicina es S o I, y la prueba de ICd es positiva, la clindamicina deberá informarse
como resistente.
DETECCIÓN DE SINERGIA DE KANAMICINA, ESTREPTOMICINA Y GENTAMICINA
En la endocarditis por enterococos, el uso solo de penicilina o ampicilina suele provocar fallos en el tratamiento. Cuando
los enterococos son sensibles in vitro a niveles altos de kanamicina, estreptomicina o gentamicina, la adición de este
antimicrobiano a la penicilina o la ampicilina es sinérgica y puede correlacionarse clínicamente con un aumento en la tasa
de curación. Según el documento M07-A10 de CLSI, el método recomendado para detectar altos niveles de resistencia a
34,35
los aminoglucósidos (HLAR) en microdilución en caldo es el siguiente.
Antimicrobiano
Gentamicina
Estreptomicina
1. Se han obtenido resultados comparables en pruebas con caldo de fosfato de dextrosa.
La utilidad de las pruebas de detección de sinergia de kanamicina, gentamicina y estreptomicina con los paneles MicroScan
se comparó con los métodos de referencia de microdilución en caldo recomendados por el CLSI. Cualquier signo de turbidez
se debe considerar como crecimiento o reincubarse para confirmar los resultados. Los resultados obtenidos con la sinergia de
gentamicina después de 18 horas de incubación son comparables a los obtenidos a las 24 horas con el método de referencia.
Para una mejor detección de la resistencia con la prueba de detección de sinergia de estreptomicina, los paneles MicroScan
deben incubarse durante 24-48 horas. Para una mejor detección de la resistencia con la prueba de detección de sinergia de
kanamicina, los paneles MicroScan deben incubarse durante 24 horas.
POCILLO DE CRECIMIENTO LIBRE DE TIMIDINA
Algunas bacterias requieren timidina para que haya crecimiento. Estas bacterias pueden manifestar una falsa sensibilidad a
las sulfonamidas debido a la falta de timidina en el caldo Mueller-Hinton. Si un microorganismo no crece en el pocillo TFG,
la CIM no debe notificarse para T/S.
DAPTOMICINA
Daptomicina incluye el suplemento de calcio recomendado por el CLSI. No se requiere ningún suplemento adicional.
LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO
1. Los paneles deshidratados de grampositivos MicroScan no deben utilizarse para determinar la sensibilidad de las cepas
de estreptococos, excepto S. agalactiae (grupo B) y el grupo de S. bovis. Estos aislados se deben analizar mediante
un método aceptado, como el panel MICroSTREP plus de MicroScan.
2. El CLSI recomienda suplementar el caldo Mueller-Hinton con sangre lisada de caballo al analizar estreptococos de
cultivo exigente (documento M07 del CLSI) y L. monocytogenes (documento M45 del CLSI).
panel grampositivo deshidratado MicroScan difiere de esta recomendación. Si hay un crecimiento inadecuado en el
pocillo de crecimiento, los resultados de la CIM de S. agalactiae (grupo B), grupo S. bovis y L. monocytogenes no son
válidos, y deberá utilizarse otro método.
3. El panel grampositivo deshidratado MicroScan puede utilizarse para identificar estreptococos de cultivo exigente. Si hay
un crecimiento inadecuado en el pocillo de crecimiento, los resultados bioquímicos no son válidos y deberá utilizarse
otro método.
4. Bacterias anaerobias: los paneles positivos combinados/positivos CIM no son adecuados para analizar cocos
grampositivos anaerobios.
5. Es probable que sea necesario realizar pruebas adicionales para determinar la identificación final cuando se obtiene
una identificación de baja probabilidad (< 85 %) (consulte Microbiologics Manual [Manual de microbiología]).
6. Las CIM de penicilina para estafilococos coagulasa negativos no son efectivas para predecir la resistencia debido a
la betalactamasa. Por ello, debe realizarse un prueba de betalactamasa para confirmar la CIM. Se ha demostrado
C29870–AD
Negativo
≤ 4/0,5 µg/mL
Media
Incubación
BHI 24 horas
1
BHI 24-48 horas
1
Concentración
500 μg/mL
1000 μg/mL
69 of 339
Positivo
> 4/0,5 μg/mL
El procedimiento del
1,36