Utilisation; Résumé Et Principe; Avertissements Et Précautions - Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation

MicroScan
Gram Positive Procedural Manual (Manuel d'utilisation pour Gram positif), PU-05 multi-régions
et anciennes plaques
B1016-138, B1016-139, B1016-140,
B1016-145, B1016-146, B1016-152,
B1016-160, B1016-161, B1016-164,
B1016-165, B1016-167, B1016-172,
B1016-173, B1016-174

UTILISATION

À utiliser avec les plaques MicroScan conventionnelles CMI/Combo pour Gram positifs et plaques conventionnelles Combo
pour Gram positifs avec concentrations critiques seules, et plaques ID de type 2 ou 3 conventionnelles pour Gram positifs. Les
plaques Pos MicroScan sont prévues pour déterminer la sensibilité aux agents antimicrobiens et/ou l'identification au niveau
de l'espèce des cocci aérobies et facultatifs à croissance rapide à Gram positif, de certains cocci aérobies exigeants à Gram
positif et de Listeria monocytogenes. Consulter la section Limites de la procédure pour une utilisation avec des streptocoques
exigeants.
RÉSUMÉ ET PRINCIPE
Les tests de sensibilité aux antimicrobiens sont des versions miniatures du test de sensibilité par dilution en bouillon qui
ont été déshydratées. Différents agents antimicrobiens sont dilués dans un bouillon Mueller-Hinton enrichi en calcium et en
magnésium ou dans un bouillon Mueller-Hinton enrichi d'autres substances permettant d'obtenir des concentrations d'intérêt
clinique. 1 Le bouillon d'oxacilline est enrichi avec du chlorure de sodium.
phosphate dextrose. Le test de résistance inductible à la clindamycine MicroScan est prévu pour détecter la résistance
inductible pour les staphylocoques avec l'agent antimicrobien clindamycine.
Le test à la céfoxitine MicroScan est conçu pour déterminer la sensibilité de l'espèce Staphylococcus aux bêta-lactamines
stables à la pénicillinase. Le test à la céfoxitine utilise le résultat à 16–20 heures dans un puits contenant de la céfoxitine à
4 μg/mL et des milieux de croissance, étiquetés CfxS, ainsi que la CMI de l'oxacilline à 16–20 heures.
Après l'inoculation et la réhydratation avec une suspension standardisée d'organisme et une incubation à 35 °C pendant
16–20 heures*, la concentration minimale inhibitrice (CMI) ou la sensibilité qualitative (Sensible, Intermédiaire ou Résistant)
de l'organisme de test est déterminée en observant la concentration d'antimicrobien minimale montrant une inhibition de
croissance
2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22
Des tests conventionnels modifiés et chromogéniques sont utilisés pour l'identification de Micrococcaceae, Streptococcaceae
et de Listeria monocytogenes. L'identification est fondée sur la détection de modifications du pH, sur l'utilisation du substrat
et sur la croissance en présence d'agents antimicrobiens après 16–44 heures d'incubation à 35 °C
* La détection précise de la résistance requiert des temps d'incubation supérieurs pour les organismes/antimicrobiens
suivants :
24 heures
24–48 heures
1. Une incubation de 24 heures n'est pas nécessaire pour l'espèce Staphylococcus dans les plaques contenant le puits de test à la céfoxitine.
Réactifs
Substrats pour l'identification
Violet de méthyle
Test des microcoques
Nitrate
Novobiocine
PNP-β-D-Glucuronide
Indoxyl Phosphatase
Voges-Proskauer
Optochine
Phosphatase
Bile esculine 40 %
L-Pyrrolidonyl-β-naphthylamide
Arginine
PNP-β-D-Galactopyranoside
Urée
AVERTISSEMENTS ET PRÉCAUTIONS
1. Pour diagnostic in vitro uniquement.
C29870–AD
.
Entérocoques
Staphylocoques
Streptocoques
Entérocoques
Abr.
CV
MS
NIT
NOV
PGR
IDX
VP
OPT
PHO
BE
PYR
ARG
PGT
URE
1 Les tests de synergies utilisent un bouillon de
Test de synergie kanamycine
1
Oxacilline
Test de synergie kanamycine
Test des synergies pour la streptomycine
Substrats pour l'identification
Mannitol
Lactose
Tréhalose
Mannose
Chlorure de sodium 6,5 %
Sorbitol
Arabinose
Ribose
Inuline
Raffinose
Bacitracine
Pyruvate
Puits de croissance sans thymidine
16 of 339
.
23,24,25,26,27,28,29
Abr.
MAN
LAC
TRE
MNS
NACL
SOR
ARA
RBS
INU
RAF
BAC
PRV
TFG