Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation page 148

MicroScan
Instrukcja procedur dotyczących bakterii Gram-dodatnich, wieloregionowa PU-05 i starsze
panele
B1016-138, B1016-139, B1016-140,
B1016-145, B1016-146, B1016-152,
B1016-160, B1016-161, B1016-164,
B1016-165, B1016-167, B1016-172,
B1016-173, B1016-174
ZASTOSOWANIE
Instrukcja dotyczy paneli MicroScan: dla wysuszonych bakterii Gram-dodatnich do określania MIC / złożonych, dla
wysuszonych bakterii Gram-dodatnich, złożonych, do określania punktów granicznych i dla wysuszonych bakterii
Gram-dodatnich do identyfikacji typu 2 oraz 3. Panele dodatnie MicroScan są przeznaczone do określania wrażliwości
bakterii na środki przeciwbakteryjne i/lub do identyfikacji na poziomie gatunku szybko rosnących tlenowych i względnie
beztlenowych ziarniaków Gram-dodatnich, niektórych tlenowych ziarniaków Gram-dodatnich o wysokich wymaganiach
odżywczych i Listeria monocytogenes. W przypadku oznaczania paciorkowców o wysokich wymaganiach wzrostowych
należy zapoznać się z rozdziałem dotyczącym ograniczeń procedury.
OMÓWIENIE I ZASADA DZIAŁANIA
Testy wrażliwości drobnoustrojów na środki przeciwbakteryjne są zminiaturyzowaną wersją testów wrażliwości wykonywanych
metodą rozcieńczeń w bulionie, które zostały odwodnione. Różne środki przeciwbakteryjne są rozcieńczone w bulionie
Muellera-Hinton z wapniem i magnezem lub w bulionie Muellera-Hinton z dodatkowym uzupełnieniem do stężeń
odpowiadających zakresowi klinicznemu.
synergizmu antybiotyków zastosowano bulion z fosforanem i glukozą. Test na indukowalną oporność na klindamycynę
MicroScan jest przeznaczony do wykrywania u gronkowców indukowalnej oporności na środek przeciwbakteryjny
klindamycynę.
Badanie przesiewowe z cefoksytyną MicroScan jest przeznaczone do określania wrażliwości gatunków Staphylococcus na
niewrażliwe na penicylinazę beta-laktamy. W badaniu przesiewowym z cefoksytyną odczytuje się wyniki po 16–20 godzinach
inkubacji w studzience zawierającej 4 µg/mL cefoksytyny i pożywkę wzrostową, oznaczonej jako CfxS i MIC oksacyliny po
16–20 godzinach inkubacji.
Po inokulacji i rehydratacji standardową zawiesiną drobnoustrojów oraz inkubacji w temperaturze 35°C przez 16–20 godzin*
na podstawie obserwacji najniższego stężenia środka przeciwbakteryjnego powodującego zahamowanie wzrostu można
oznaczyć minimalne stężenie hamujące (MIC) lub wrażliwość jakościową (wrażliwy, średnio wrażliwy lub oporny) dla
badanego drobnoustroju.
Zmodyfikowane testy konwencjonalne i chromogeniczne używane są w celu identyfikacji Micrococcaceae, Streptococcaceae
i Listeria monocytogenes. Identyfikacja jest oparta na wykrywaniu zmiany pH, wykorzystaniu substratu i wzrostu w obecności
środków przeciwbakteryjnych po 16–44 godzinach inkubacji w temperaturze 35°C.
* Prawidłowe wykrywanie oporności wymaga wydłużonego okresu inkubacji w przypadku następujących drobnoustrojów
i środków przeciwbakteryjnych:
24 godziny
24–48 godzin
1. Inkubacja 24-godzinna na panelach ze studzienkami przesiewowymi z cefoksytyną nie jest wymagana w przypadku gatunków Staphylococcus.
Odczynniki
Substraty identyfikacyjne
Fiolet krystaliczny
Studzienki z mikrokokami
Azotan
Nowobiocyna
PNP-β-D-glukuronid
Fosfataza indoksylowa
Test Vogesa-Proskauera
Optochina
Fosfataza
Żółć i eskulina 40%
β-naftylamid-L-pirolidonylu
Arginina
C29870–AD
Bulion z oksacyliną jest uzupełniony chlorkiem sodu.
1
2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22
Enterokoki
Gronkowce
Paciorkowce
Enterokoki
Badanie przesiewowe synergizmu
z kanamycyną
1
Oksacylina
Badanie przesiewowe synergizmu
z kanamycyną
Badanie przesiewowe synergizmu ze
streptomycyną
Skrót Substraty identyfikacyjne
CV Mannitol
Laktoza
MS
NIT Trehaloza
NOV Mannoza
PGR Chlorek sodu 6,5%
IDX Sorbitol
VP Arabinoza
Ryboza
OPT
PHO Inulina
BE Rafinoza
PYR Bacytracyna
ARG Pirogronian
148 of 339
W studzienkach do badania
1
23,24,25,26,27,28,29
Skrót
MAN
LAC
TRE
MNS
NACL
SOR
ARA
RBS
INU
RAF
BAC
PRV