Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation page 158

OGRANICZENIA METODY
1. Panele MicroScan wysuszonych bakterii Gram-dodatnich nie powinny być używane do określenia wrażliwości izolatów
paciorkowców z wyjątkiem S. agalactiae (grupa B) i grupy S. bovis. Te izolaty powinny być oznaczane akceptowaną
metodą, na przykład za pomocą paneli MicroScan MICroSTREP plus.
2. Instytut CLSI zaleca wzbogacenie bulionu Muellera-Hinton hemolizowaną krwią końską w przypadku badania
paciorkowców o wysokich wymaganiach wzrostowych (dokument CLSI M07) oraz L. monocytogenes (dokument M45
CLSI). Procedura dla paneli MicroScan wysuszonych bakterii Gram-dodatnich różni się od tego zalecenia. Jeżeli
1,36
wzrost w studzience kontroli wzrostu jest zbyt słaby, wyniki MIC uzyskane dla S. agalactiae (grupa B), grupy S. bovis
i L. monocytogenes nie są prawidłowe i należy zastosować inną metodę.
3. Panele MicroScan wysuszonych bakterii Gram-dodatnich mogą być wykorzystywane do identyfikacji paciorkowców
o wysokich wymaganiach odżywczych. Jeżeli wzrost w studzience kontroli wzrostu jest niewystarczający, wyniki testów
biochemicznych nie są ważne i należy zastosować inną metodę.
4. Bakterie beztlenowe — panele dodatnie złożone / dodatnie do określania MIC nie są odpowiednie do badania
beztlenowych ziarniaków Gram-dodatnich.
5. Dodatkowe testy w celu określenia końcowej identyfikacji mogą być konieczne, jeżeli uzyskany wynik identyfikacji
charakteryzuje się niskim prawdopodobieństwem (< 85%); w takiej sytuacji należy się zapoznać z dokumentem
Microbiologics Manual (Podręcznik mikrobiologii).
6. Wartości MIC penicyliny dla gronkowców koagulazoujemnych mogą nie być użyteczne w określaniu oporności
wynikającej z wytwarzania β-laktamazy.
β-laktamazy. Szczepy S. saprophyticus z MIC penicyliny wynoszącym 1–2 µg/mL nie wytwarzają β-laktamazy
i dlatego ampicylina, amoksycylina lub penicylina mogą być lekami z wyboru w zakażeniach układu moczowego tymi
drobnoustrojami.
7. W studzienkach niektórych środków przeciwbakteryjnych może wystąpić niewielkie zmętnienie związane z niepełnym
rozpuszczeniem niektórych składników podłoża. Nie należy interpretować tego jako wzrostu.
8. Przed zaakceptowaniem identyfikacji drobnoustroju wyniki testu powinien zinterpretować wykwalifikowany personel
kliniczny na podstawie własnej oceny, wiedzy i ewentualnych dodatkowych testów potwierdzających.
9. Numery biotypu nie powinny być używane do identyfikacji fenotypowej szczepów izolowanych z różnych próbek
pobieranych od tego samego pacjenta.
10. Wyniki uzyskane z następującymi kombinacjami drobnoustrojów i środków przeciwbakteryjnych podanymi poniżej
wykazywały rozbieżne wyniki MIC w porównaniu z metodą referencyjną z nocną inkubacją.
przeciwbakteryjny jest szczególnie ważny w leczeniu pacjenta, należy posłużyć się procedurą alternatywną lub nie
wydawać wyniku dla danego środka przeciwbakteryjnego z uwagi na niski poziom korelacji.
Drobnoustrój
S. pneumoniae
Paciorkowce zieleniejące
inne niż grupy S. bovis
Paciorkowce
beta-hemolizujące inne
niż S. agalactiae
(grupa B)
Wszystkie paciorkowce
Enterokoki
E. faecium
C29870–AD
Dlatego, aby potwierdzić MIC, należy przeprowadzić test na obecność
Leki, które należy
oznaczyć inną metodą,
jeżeli są szczególnie
ważne w leczeniu
pacjenta
Meropenem
2
Leki, które nie będą zgłaszane
wszystkie
wszystkie
wszystkie
Arbekacyna
Azytromycyna
Ceftarolina
Klarytromycyna
Klindamycyna (tylko EUCAST)
Gentamycyna
Nitrofurantoina
Penicylina (tylko EUCAST)
Arbekacyna
Azytromycyna
Ceftarolina
Klarytromycyna
Imipenem
158 of 339
Jeżeli środek
1