Résultats - Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation

d'incubation (18–20 h pour les lectures sur l'instrument autoSCAN-4) ont été comparables à ceux obtenus à 24 h
avec la méthode de référence.
F. Pour les plaques contenant uniquement de l'oxacilline : les staphylocoques sont considérés comme résistants
(peu importe la CMI) à l'ampicilline, à l'amoxicilline/acide clavulanique, à l'ampicilline/au sulbactam, à
l'ertapénème, à l'imipénème, au méropénème, à la pénicilline, à la pipéracilline/au tazobactam, à la ticarcilline/à
l'acide clavulanique et aux antimicrobiens de la classe des céphalosporines (sauf la ceftaroline) lorsque les
CMI de l'oxacilline sont > 2 μg/mL pour S. aureus et S. lugdunensis, et ≥ 0,5 μg/mL pour les staphylocoques à
coagulase négative autres que S. lugdunensis.
G. Pour les plaques contenant de l'oxacilline et le puits de test céfoxitine (CfxS) : les staphylocoques sont considérés
comme résistants (peu importe la CMI) à l'ampicilline, à l'amoxicilline/acide clavulanique, à l'ampicilline/au
sulbactam, à l'ertapénème, à l'imipénème, au méropénème, à la pénicilline, à la pipéracilline/au tazobactam, à
la ticarcilline/à l'acide clavulanique et aux antimicrobiens de la classe des céphalosporines (sauf la ceftaroline)
lorsque le puits CfxS est > 4 μg/mL pour tous les staphylocoques ou lorsque les CMI de l'oxacilline sont > 2 μg/mL
pour S. aureus et S. lugdunensis, ou lorsque l'oxacilline est ≥ 0,5 μg/mL pour tous les autres staphylocoques à
coagulase négative.
Pour les staphylocoques à coagulase négative autres que S. lugdunensis, lorsque le CfxS est ≤ 4 μg/mL et la CMI
de l'oxacilline égale à 0,5, le résultat mecA est négatif et l'interprétation de l'oxacilline est S* ; lorsque le CfxS est
≤ 4 μg/mL et la CMI de l'oxacilline égale à 1 ou 2, le résultat mecA est variable et doit être vérifié avant de rendre
ces antimicrobiens comme sensibles.
H. Dans les puits contenant des aminosides (p. ex. : gentamicine) et des macrolides (p. ex. : érythromycine), il est
possible que la croissance ne soit pas aussi forte que dans le puits de croissance du fait de différences liées au
milieu de base. Un soin particulier doit être apporté à l'interprétation de ces résultats.
I. Un « effet de traîne » peut être observé pour certaines combinaisons médicament/organisme. Une traînée au
triméthoprime/sulfaméthoxazole (T/S) avec l'utilisation du système de réhydratation/inoculation RENOK est due
à la concentration de l'inoculum. Le critère d'évaluation doit être lu comme la concentration la plus faible qui,
lorsqu'elle est comparée au puits de croissance, présente :
a. Environ 80 % de réduction de la croissance (T/S)
b. Un bouton blanc inférieur à 2 mm de diamètre ou
c. Un bouton blanc semi-translucide
J. Un léger voile peut être observé avec la classe des agents antimicrobiens fluoroquinolones (p. ex. : la
ciprofloxacine, la norfloxacine et l'ofloxacine) en cas d'utilisation d'une méthode Prompt d'inoculation des
staphylocoques, y compris l'organisme de contrôle de qualité S. aureus ATCC 29213. Ceci ne doit PAS être
interprété comme une croissance.
K. Si un organisme ne présente pas de croissance dans le puits de culture sans thymidine (TFG), la CMI ne doit pas
être rapportée pour T/S.
6. Lecture des substrats d'identification
A. Lire tous les substrats d'identification sur un fond blanc sauf CV, MS, NOV, OPT, NACL et BAC, qui doivent être
lus sur un fond noir (éclairé de façon indirecte).
B. Les résultats IDX et PHO sont lus après 16–20 heures d'incubation.
C. Les plaques avec un test PGT négatifs et moins de 3 glucides positifs doivent être réincubées durant 24 heures
supplémentaires avant de faire une lecture finale et l'identification.
D. Seules les plaques qui ont 3 glucides ou une réaction PGT positive peuvent recevoir les réactifs complémentaires
à 16–20 heures. À 40–44 heures, l'ajout de réactifs se fait sans considération du nombre de tests positifs.
E. Avant l'ajout de réactifs, noter toutes les réactions positives.
F. Ajouter les réactifs comme expliqué ci-dessous :
1) Ajouter 1 goutte d'hydroxyde de potassium 40 % (KOH), puis 1 goutte d'alpha-naphtol 5 % dans le puits VP.
Attendre au moins 20 minutes que la réaction VP se développe avant la lecture.
2) Ajouter 1 goutte d'acide sulfanilique 0,8 % et de N,N-diméthyl-alpha-naphthylamine 0,5 % dans le puits NIT.
Attendre au moins 5 minutes que la réaction NIT se développe avant la lecture.
3) Ajouter 2 gouttes de réactif peptidase dans le puits PYR. Attendre au moins 2 minutes avant la lecture.
G. Se référer à la section RÉSULTATS pour avoir une aide sur l'interprétation biochimique.
RÉSULTATS
1. Résultats biochimiques
A. Interprétations biochimiques
C29870–AD
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