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Les langues disponibles
Les langues disponibles
•
Consulter les réglementations nationales, régionales ou locales relatives à l'élimination des composants potentiellement toxiques.
•
Minimiser la contamination microbienne des réactifs ; sinon une augmentation de la coloration non spécifique peut survenir.
•
La récupération ou des durées ou températures d'incubation autres que celles précisées peuvent donner des résultats erronés. Tout
changement de ce type doit être validé par l'utilisateur.
Mode d'emploi
Diluer le concentré de sonde ISH à la concentration déterminée par l'utilisateur en utilisant la BOND Hybridization Solution. Transférer la
sonde diluée à un BOND Open Container et l'enregistrer comme sonde ISH sur le système BOND (comprend les systèmes BOND-MAX
et BOND-III).
Les dilutions de la sonde doivent être testées en utilisant le tissu de contrôle positif approprié pour la sonde ISH concernée (voir «
Contrôle de qualité » dans la section « Utilisation des réactifs BOND » de la documentation utilisateur).
Lors de la préparation des dilutions pour la titration, il est nécessaire de tenir compte du volume mort du BOND Open Container
approprié (pour les valeurs, consulter la documentation utilisateur BOND).
Limites spécifiques du produit
La BOND Hybridization Solution a été développée pour une utilisation sur le système BOND automatisé (comprend les systèmes
BOND-MAX et BOND-III).
Le protocole de traitement préalable et de coloration recommandé est déterminé par la sonde spécifique (et la détection) sélectionnée.
Consulter le mode d'emploi pertinent pour des informations complémentaires.
Les utilisateurs qui s'écartent des procédures de test recommandées doivent accepter la responsabilité de l'interprétation des résultats
de patient dans ces circonstances. Les durées de protocole peuvent varier en raison de différences dans le type de tissu, la fixation et
le traitement. En outre, la concentration en BOND Enzyme et la durée d'incubation peuvent nécessiter une optimisation selon le type de
tissu, ainsi que les conditions de traitement et de fixation.
Des contrôles négatifs des réactifs doivent être utilisés pour l'hybridation in situ chromogène (CISH) lors de l'optimisation des conditions
de traitement préalable et des durées du protocole.
La concentration appropriée de la sonde ISH de l'utilisateur peut varier, en raison de différences dans la fixation de tissu et l'efficacité de
la digestion enzymatique, et doit être déterminée empiriquement.
Résolution des problèmes
La référence 3 peut aider pour les mesures correctives.
Les échantillons de test doivent être complétés par les contrôles de tissu et de réactifs appropriés.
Contacter le distributeur local ou le bureau régional de Leica Biosystems pour signaler une coloration inhabituelle.
Informations complémentaires
De plus amples informations concernant l'hybridation in situ (ISH) avec les réactifs BOND, sous les rubriques Principes des modalités
opératoires, Matériel nécessaire, Préparation de l'échantillon, Contrôle de qualité, Vérification d'analyse, Interprétation de la
coloration, Légendes des symboles sur les étiquettes et Limites générales, se trouvent dans « Utilisation des réactifs BOND » dans la
documentation utilisateur BOND.
Bibliographie
1. Clinical laboratory Improvement Amendments of 1988, Final Rule 57 FR 7163 February 28, 1992.
2. Villanova PA. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious
diseases transmitted by blood and tissue; proposed guideline. 1991; 7(9). Order code M29-P.
3. Wilkinson DG. The theory and practice of in situ hybridization. In: Wilkinson DG. (ed.) In situ Hybridization. A practical approach. 2nd
Edition. New York: Oxford University Press, 1998, pp.18–20.
Date de publication
03 octobre 2018
AR9037
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