Materiel Et Reactifs; Réactifs Fournis Dans Le Kit; Validité Et Conservation; Utilisation Du « Mm Ctl - Adiagene ADIAVET MM FAST TIME Manuel D'instruction

II. Matériel et réactifs
1. Réactifs fournis dans le kit
ADI601-100
A5 ................................................................... solution d'amplification
MM CTL+ .............................................contrôle positif M. meleagridis
MI CTL+ ....................................................... contrôle positif M. iowea
EPC-Amp ........................ contrôle exogène non cible d'amplification
NF-Water ............................................................... Eau Nuclease free
ADI601-500
A5 ................................................................... solution d'amplification
MM CTL+ .............................................contrôle positif M. meleagridis
MI CTL+ ....................................................... contrôle positif M. iowea
EPC-Amp ........................ contrôle exogène non cible d'amplification
NF-Water ............................................................... Eau Nuclease free
Une notice téléchargeable sur
2. Validité et conservation
A réception, le kit doit être stocké à <-15°C.
Il est recommandé d'aliquoter le réactif « A5 » si le nombre d'analyses à effectuer nécessite
plus de trois décongélations.
Ne pas décongeler plus de 3 fois.
Les réactifs temps réel sont sensibles à la lumière : les conserver à l'obscurité.
Le réactif « A5 » est prêt à être utilisé pour la réaction PCR.
Ne pas mélanger des réactifs de différents lots.
3. Utilisation du « MM CTL+ »
« MM CTL+ » est un témoin positif d'amplification.
Ajouter 200 µl d'eau "NF-Water" au « MM CTL+ » et vortexer au moins 20 secondes.
Aliquoter cette solution par 6 ou 12 µl et conserver à <-15°C.
Pour chaque analyse, utiliser 5 µl de « MM CTL+ » dans un des puits.
4. Utilisation du « MI CTL+ »
« MI CTL+ » est un témoin positif d'amplification.
Ajouter 200 µl d'eau "NF-Water" au « MI CTL+ » et vortexer au moins 20 secondes. Aliquoter
cette solution par 6 ou 12 µl et conserver à <-15°C.
Pour chaque analyse, utiliser 5 µl de « MI CTL+ » dans un des puits.
5. Utilisation du « EPC-Amp » :
L'EPC-Amp est utilisé quand une technique autre que l'extraction ADIAPURE™ SLB est
appliquée (par exemple après l'extraction d'ADN en colonnes de silice ou billes
magnétiques).
Aliquoter et conserver cette solution à <-15°C en fonction de la taille des séries de PCR. Les
aliquotes ne doivent pas subir plus de 3 décongélations.
Pour chaque réaction PCR, nous recommandons d'ajouter 0,5 µl « EPC-Amp » pour 10 µl du
« A5 ».
6. Matériel nécessaire mais non fourni dans le kit
Attention : le consommable utilisé doit être Nuclease-free (par exemple autoclavé deux fois
25 minutes à +120°C ou une fois 60 minutes à +121°C)
- Thermocycleur avec son consommable pour PCR Temps réel : tubes PCR de 0,2 ml ou
plaques PCR 96 puits fermées de qualité optique
- Poste de Sécurité Microbiologique de type II
- Centrifugeuse pour microtubes
www.biox.com
1 x 1000 µl tube à bouchon vert (Réactif prêt à l'emploi)
1 tube à bouchon violet (A reconstituer)
1 tube à bouchon violet (A reconstituer)
1 x 150 µl tube à bouchon blanc (Réactif prêt à l'emploi)
1 x 1000 µl tube à bouchon blanc (Réactif prêt à l'emploi)
5 x 1000 µl tubes à bouchon vert (Réactif prêt à l'emploi)
1 tube à bouchon violet (A reconstituer)
1 tube à bouchon violet (A reconstituer)
2 x 150 µl tubes à bouchon blanc (Réactif prêt à l'emploi)
1 x 1000 µl tube à bouchon blanc (Réactif prêt à l'emploi)
- 5 -